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如何成為一個 qPCR 引物設(shè)計高手

更新時間:2023-02-15      點擊次數(shù):2622

qPCR(Quantitative real-time PCR)實驗中,模板質(zhì)量、引物設(shè)計、qPCR反應(yīng)體系、程序設(shè)置,均是影響實驗成功的重要因素。其中,qPCR的引物設(shè)計尤為重要,決定了qPCR擴(kuò)增效率和擴(kuò)增產(chǎn)物的特異性,引物設(shè)計都有哪些原則和要點,一起來了解一下吧!

 

qPCR引物設(shè)計原則

1. 引物長度一般在18~30 nt之間,擴(kuò)增產(chǎn)物長度盡量控制在 80~200 bp之間。

引物設(shè)計太短會導(dǎo)致非特異擴(kuò)增,太長則容易形成二級結(jié)構(gòu)(如發(fā)夾結(jié)構(gòu))。擴(kuò)增產(chǎn)物太長會影響到PCR擴(kuò)增效率。

 

2. 引物GC含量控制在40%~60%之間,正反向引物Tm值介于55~65℃之間,正反引物的Tm差值不超過3℃。

 

3. 引物3′端盡量避免選擇A,最好選擇T。

引物3′端錯配時,不同堿基引發(fā)合成效率存在著很大的差異,當(dāng)末位堿基為A時,即使在錯配的情況下,也能引發(fā)鏈合成,而當(dāng)末位為T時,錯配引發(fā)效率大大降低。

 

4. 單個堿基重復(fù)≤3個。

引物中四種堿基的分布最好是隨機(jī)的,尤其3′端避免超過3個連續(xù)的G或C,因為3個以上連續(xù)的G或C容易在GC富集序列區(qū)產(chǎn)生錯誤引發(fā)。

 

5. 引物設(shè)計區(qū)域應(yīng)避開復(fù)雜二級結(jié)構(gòu)。

擴(kuò)增產(chǎn)物單鏈形成二級結(jié)構(gòu)會影響PCR順利進(jìn)行,可用軟件(比如RNAstructure)預(yù)測靶序列是否存在二級結(jié)構(gòu),盡量避開該區(qū)域設(shè)計引物。

 

6. 引物自身和引物之間應(yīng)盡量避免堿基連續(xù)互補(bǔ)。

引物自身和引物之間不能有連續(xù)4個堿基的互補(bǔ),引物自身存在互補(bǔ)序列會形成發(fā)夾結(jié)構(gòu)而影響引物與模板的復(fù)性結(jié)合,而引物之間互補(bǔ)會產(chǎn)生引物二聚體而降低PCR效率甚至影響定量準(zhǔn)確性。如果引物二聚體及發(fā)夾結(jié)構(gòu)不可避免,應(yīng)盡量使其△G值不要過高(應(yīng)小于4.5kcal/mol)。

 

7. 引物擴(kuò)增的是目標(biāo)特異產(chǎn)物。

qPCR檢測最終目的是了解目的基因的豐度,如果出現(xiàn)非特異擴(kuò)增,定量會不準(zhǔn)確。所以設(shè)計好引物后需要在序列數(shù)據(jù)庫中比對產(chǎn)物的特異性。


 

 

qPCR引物設(shè)計方法

以上我們了解了qPCR引物設(shè)計原則,看上去內(nèi)容多而復(fù)雜,在實際應(yīng)用中,我們可借助生物學(xué)軟件完成qPCR引物設(shè)計。常用的軟件有Primer-BLAST、Primer3、Primer Premier、Primer Express、Beacon Designer、Oligo 7等,NCBI網(wǎng)站的Primer-BLAST無需下載軟件,可以直接打開網(wǎng)頁設(shè)計引物,除了常規(guī)引物參數(shù)設(shè)置外,還可以設(shè)置跨越內(nèi)含子引物和檢測引物的特異性,應(yīng)用非常廣泛。接下來我們通過以下三步來學(xué)習(xí)利用Primer-BLAST成功設(shè)計qPCR引物。

 

01 查找目的基因序列

qPCR方法可以檢測基因組DNA含量,也可以檢測基因轉(zhuǎn)錄水平的表達(dá)量(RNA的含量),后者需要先提取組織部位的RNA,進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄得到cDNA,再做檢測。所以設(shè)計引物之前需要明確實驗?zāi)康?,明確模板是DNA還是cDNA,不同類型模板,需要下載的序列是不同的?;虮磉_(dá)量的檢測是目前qPCR的主要應(yīng)用方向,因此今天以基因表達(dá)量分析為例介紹qPCR引物的設(shè)計方法。

 

以水稻產(chǎn)量基因GW2為例設(shè)計引物,在NCBI數(shù)據(jù)庫主頁Gene數(shù)據(jù)庫中搜索GW2,獲得該基因mRNA的Accession號和FASTA序列。

 

02 設(shè)計引物

打開NCBI的Primer-BLAST頁面,出現(xiàn)PCR Template,Primer Parameters,Exon/intron selection,Primer Pair Specificity Checking Parameters四種參數(shù)設(shè)置。

 

① PCR Template是針對模板的設(shè)置,設(shè)計人員可以選擇輸入accession號、FASTA序列或者上傳FASTA序列文件等方式導(dǎo)入模板序列,優(yōu)先輸入accession號,這種方式在輸出頁面可以直觀地展現(xiàn)引物對應(yīng)外顯子的位置。Range可以指出引物位置范圍,如果我們只想在CDS區(qū)設(shè)計引物,可以把范圍直接鎖定在CDS區(qū),此處未填寫代表全長序列都參與設(shè)計。

 

② Primer Parameters是針對引物參數(shù)的設(shè)置,本次為新引物設(shè)計,無需填寫引物序列。PCR產(chǎn)物大小建議設(shè)置為80~200 bp,如果模板復(fù)雜較難設(shè)置出合適的引物,產(chǎn)物大小可適當(dāng)延長至300 bp。輸出引物對數(shù)和引物熔解溫度(Tm值)選擇默認(rèn)設(shè)置即可。

 

③ Exon/intron selection是針對基因組序列對mRNA序列擴(kuò)增結(jié)果有影響而設(shè)計的跨內(nèi)含子引物設(shè)計方案,參數(shù)包括引物是否跨越內(nèi)含子或者exon-exon拼接點,設(shè)置參數(shù)越多,可能導(dǎo)致設(shè)計不出合適引物。所以這欄建議選擇默認(rèn)設(shè)置,后續(xù)通過引物與外顯子的相對位置來篩選引物。

 

④ Primer Pair Specificity Checking Parameters是針對引物特異性篩選的參數(shù)設(shè)置,數(shù)據(jù)庫和物種根據(jù)實際情況選擇,這里選擇了Refseq mRNA和水稻。有些基因可能存在可變剪切而有多個轉(zhuǎn)錄本,Allow splice variants處打勾代表可以擴(kuò)增所有轉(zhuǎn)錄本(此時PCR template處應(yīng)輸入mRNA序列而非accession號)。其他參數(shù)選默認(rèn)設(shè)置。

圖片

 

⑤ 點擊Get Primers,即自動生成合適引物。我們看到頁面中,Specificity of primers處描述“Primer pairs are specific to input template as no other targets were found in selected database: Refseq mRNA (Organism limited to Oryza sativa Japonica Group)",代表10對引物均可特異性結(jié)合靶序列,我們可以選擇不同區(qū)域的兩對跨內(nèi)含子的引物進(jìn)行后續(xù)預(yù)實驗驗證。

 

03 引物預(yù)實驗驗證

軟件設(shè)計的引物在理論上是可用的,而實際實驗中,會有很多未知的因素而無法得到理想結(jié)果,所以強(qiáng)烈建議用預(yù)實驗驗證引物的有效性。

 

cDNA原液以4為倍數(shù)進(jìn)行倍比稀釋,得到4~6個梯度,同時用預(yù)選的引物對進(jìn)行qPCR擴(kuò)增(要設(shè)置NTC)。結(jié)束后觀察熔解曲線的特異性和標(biāo)準(zhǔn)曲線的擴(kuò)增效率,如果熔解曲線單一、尖銳,初步判斷產(chǎn)物是特異的,擴(kuò)增效率要介于90%~110%之間,越接近100%,定量越準(zhǔn)確。滿足這些條件后,建議把PCR產(chǎn)物(謹(jǐn)防污染)做一代測序驗證序列的特異性。最后,根據(jù)實驗需要選擇合適的qPCR引物用于后續(xù)正式實驗即可。

 

補(bǔ)充Tips:

1. 這里介紹了一般的qPCR引物設(shè)計流程,如果仍沒有篩選到合適的引物,需要針對性的調(diào)整參數(shù),必要時需要在Advanced parameters調(diào)整參數(shù)以設(shè)計到合適的引物。

2. 在表達(dá)量研究實驗中,基因組殘留對后續(xù)定量結(jié)果的影響是必須考慮的因素,可以有兩種方式來解決此問題,其中一種方式在引物設(shè)計里介紹過,即設(shè)計跨越內(nèi)含子的引物使基因組序列無法被擴(kuò)增,另一種方式是在RNA提取過程中增加基因組去除的步驟,同時反轉(zhuǎn)錄實驗前也增加基因組去除的步驟以消除殘留DNA得到準(zhǔn)確定量結(jié)果,后一種方式無需考慮引物設(shè)計的位置,引物設(shè)計更加簡化。

相信大家get到了利用Primer-BLAST設(shè)計qPCR引物的技術(shù)要點,引物設(shè)計非常重要,穩(wěn)定可靠、特異、靈敏的熒光定量試劑也很重要。TIANGEN的熒光定量產(chǎn)品質(zhì)量可靠、定量準(zhǔn)確,一直以來受到廣大客戶的信賴。


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